全面评估单碱基编辑技术mrna脱靶风险-ag凯发真人

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撰文 | 黄宇翔

责编 | 陈晓雪

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许多严重的疾病来自基因突变，因此基因编辑技术的进步为脊髓性肌营养不良、地中海贫血、视网膜黄斑变性等遗传性疾病患者带来了希望。[1]

但是，在将体细胞基因编辑技术向临床推进、造福患者的道路上，研究者对技术潜在的安全性问题必须小心谨慎，在临床试验以前对风险做充分的评估。脱靶效应始终是悬挂在利用基因编辑技术进行疾病治疗头上的 “达摩克利斯之剑”。基因编辑技术的脱靶效应又可以细分为基因组和转录组两个层面，此前的大量研究都关注于基因编辑技术在基因组层面对于dna的脱靶效应分析。[1-3]

在2019年6月10日上线的《自然》杂志上，中国神经科学研究所的杨辉博士与其合作者，对于单碱基编辑技术（在crispr/cas9 基础上开发的一类基因编辑技术）在 mrna 水平上的脱靶效应进行了全面细致的分析，发现即使目前领域内最先进的单碱基编辑工具 be3 和abe7. 10，也都存在不容忽视的 mrna 脱靶效应。杨辉团队通过引入点突变的方法，对现有的单碱基编辑工具进行了改良，获得了 mrna 脱靶率较低的单碱基编辑工具。这一具有更高精度的工具，将为未来单碱基编辑工具应用于临床治疗打下坚实的基础。[4]

研究者以 hek293t 细胞系为模型开展本项研究。通过对混合细胞和单细胞转录本进行测序分析，研究者发现表达单碱基编辑工具be3和abe7. 10都会显著提升 mrna 中突变的数目。对所引发的突变序列进行分析，研究者发现这些突变在一些原癌基因和抑癌基因中富集程度比较高，这意味着未来的研究者在试图将单碱基编辑技术应用于临床时，需要对该技术诱发癌症的风险进行评估。[4]

为了降低现有工具的 mrna 脱靶率，研究者通过突变优化和尝试人源结构域的方法，获得了具有高dna编辑效率、低rna脱靶率的be3^w90a、be3 (ha3a^r128a)、be3(ha3a^y130f)、abe7. 10^f148a等优化版单碱基编辑工具。这些新工具能将检测到的rna突变率降低到与阴性对照相近的水平，其表现超过了此领域领军科学家 david liu 团队和 keith joung团队为降低mrna脱靶率而独立开发的优化版本。[4-6]

不同于构成基因组的 dna，mrna 在细胞中存在很多个拷贝，那为什么少数一些mrna的异常会引起研究者如此高度的重视？“rna的脱靶效应会影响正常细胞的功能。” 该项研究的通讯作者杨辉告诉《知识分子》。“如果长期造成rna的脱靶效应，比如在aav（腺相关病毒）介导的成体基因治疗中”，细胞内rna的突变会影响细胞的正常生长，甚至可能会有致癌风险。[7-9]  

 参考文献：

[1] reeset al., (2018) base editing: precision chemistry on the genome andtranscriptome of living cells. nature reviews genetics. doi: 10.1038/s41576-018-0059-1

[2]zuo, e. et al., (2019) cytosine base editor generates substantial off-targetsingle-nucleotide variants in mouse embryos. science, doi:10.1126/science.aav9973

[3]jin,s. et al., (2019) cytosine, but not adenine, base editors induce genome-wideoff-target mutations in rice. science, doi:10.1126/science.aaw7166 

[4] zhouet al., (2019) off-target rna mutation induced by dna base editing and itselimination by mutagenesis. nature.

[5] grünewaldet al., (2019) transcriptome-wide off-target rna editing induced bycrispr-guided dna base editors. nature. doi: 10.1038/s41586-019-1161-z

[6] reeset al., (2019) analysis and minimization of cellular rna editing by dna adeninebase editors. science advance. doi: 10.1126/sciadv.aax5717

[7]villiger,l. et al., (2018) treatment of a metabolic liver disease by in vivo genome baseediting in adult mice. nat med. doi:10.1038/s41591-018-0209-1

[8]rossidis,a. c. et al., (2018) in utero crispr-mediated therapeutic editing of metabolicgenes. nat med. doi:10.1038/s41591-018-0184-6 

[9]maeder,m. l. et al., (2019) development of a gene-editing approach to restore visionloss in leber congenital amaurosis type 10. nat med. doi:10.1038/s41591-018-0327-9

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